Institut für experimentelle Immunologie und Bildgebung

Lichtblatt-Fluoreszenzmikroskopie von mit ECi geclearten Organen. Optisches Clearing mit ECi erlaubt es harte und weiche murine Organe, wie Knochen (Calvaria, links), Niere (mitte) und Herz (rechts), mittels LSFM zu visualisieren. Während das Autofluoreszenzsignal detailierte Informationen über den generellen Aufbau des Gewebes liefert, erlaubt die Markierung mit spezifischen Antikörpern die Auflösung von definierten Zelltypen, wie zum Beispiel endotheliale Färbungen (CD31). (Von Anika Klingberg, )

Darstellung von NETs durch REM (= Rasterelektronenmikroskop). Humane Neutrophile wurde mit PMA stimuliert und E.coli hinzugefügt. Diese wurden für 3 Stunden bei 37°C inkubiert, um NETs zu induzieren, welche die E.coli einfingen. Das Bild wurde anschließend mit Photoshop (Adobe) nachbearbeitet und angefärbt. (Von Jacqueline Heinen-Weiler)

Zweifarbige Darstellung von NETs durch dSTORM. Humane Neutrophile wurden mit PMA für 3 Stunden bei 37°C stimuliert. Anschließened wurden sie mit 4% PFA fixiert. Histon H1 und die Neutrophile Elastase wurden durch Antikörper angefärbt. Durch Zugabe des MEA-Puffers wurden die Fluochrome in den blinkenden Zustand gebracht. (Von Alexandra Brenzel und Jacqueline Heinen-Weiler)

In vitro Zellwandfärbung der Hyphen des Pilzes Aspergillus fumigatus. Aspergillus fumigatus tdTomato wurde mit dem fluoreszierenden Antikörper JF5 Dylight650 und der Nukleus mit DAPI gefärbt. Der Pilz wurde für 16h nach Aussaat der Konidien wachsen gelassen. (Von Djamschid Solouk)

Darstellung von NETs durch REM (= Rasterelektronenmikroskop) mit zentralem Zoom. Humane Neutrophile wurde mit PMA stimuliert und E.coli hinzugefügt. Diese wurden für 3 Stunden bei 37°C inkubiert, um NETs zu induzieren, welche die E.colis einfingen. (Inlens 50X, SE2 1.01KX, SE2 29.27KX) (Von Jacqueline Heinen-Weiler)

Mikroglia im Gehirn einer CX3CR1-GFP Maus. In-situ 2-Photonenaufnahmen eines CX3CR1-GFP Mausgehirns zeigen GFP+ Mikroglia im Gewebe unterhalb der Hirnhäute (SHG) und das Blutgefäßsystem des Gehirns (CD31). (Von Anika Klingberg, )

Alveolarmakrophagen in der Lunge. In-situ 2-Photonenaufnahme einer MacBlue-eCFP Maus aus der Lunge. Zu sehen sind CFP+ Alveolarmakrophagen in den Alveolen der Lunge (SHG). (Von Sophie Henneberg)

PMA-induzierte NETose humaner Neutrophiler. 2-Photonenaufnahmen von NETose Events nach PMA Stimulation. Die extrazelluläre Netze wurden mit Sytox-Orange gefärbt, während die Aktivierung der Neutrophilen mithilfe der Expression des Zelloberflächenmarkers CD66b visualisiert wurde. (Von Anika Klingberg)

Lichtblatt-Fluoreszenzmikroskopie von ECi geclearten Nieren. Optische Schnitte einer ECi geclearten und mit LSFM visualisierten, gesamten Mausniere. Zu sehen sind endotheliale Strukturen (CD31), wie interlobäre Gefäße und die Gefäßschleifen der Glomeruli. (Von Anika Klingberg, )

Kombinierte konfokale und 2-Photonen Laser Scanning Mikroskopie der glomerulären Kapillarschleifen. Sequentielle konfokale und 2-Photonen Laser Scanning Mikroskopie erlaubt die Visualisierung endothelialer Strukturen (CD31) in gesunden (links) und NTN-betroffenen (rechts) glomerulären Kapillarschleifen in Kombination mit dem SHG Signal der Bowman-Kapsel im autofluoreszenten Nierengewebe (Größenbalken = 20 µm). (Von Anika Klingberg, )

Home
Gruppe
Forschung
Publikationen
- 2017
- 2016
- 2015
- 2014
- 2013 und früher
- Reviews
- Covers
Visuals
- Bilder
- Filme
Originale
- Die Catchup Maus
Technologien
- Mikroskopie
Lehre
IMCES

Institut für Experimentelle Immunologie und Bildgebung
Universitätsklinikum Essen

Immunzellfunktion in vivo

Willkommen auf unserer Webseite!

Am IEIB untersuchen wir die Funktion von Immunzellen im Kontext eines intakten Organismus. Unter Einsatz modernster mikroskopischer Bildgebungstechniken und innovativer experimenteller Systeme analysieren wir, wie sich definierte Immunzellpopulationen unter physiologischen und pathologischen Randbedingungen verhalten und klären die zugrundeliegenden molekularen Mechanismen auf. Krankheitsmodelle fokussieren auf Entzündungen im Zusammenhang mit Lungeninfektionen durch humanpathogene Pilze oder Bakterien oder als Folge von Schlaganfall und Tumoren.

Interview mit Prof. Dr. Matthias Gunzer als Teil eines Einführungsvideos des Zentrums für Medizinische Biotechnologie (ZMB).
Neuigkeiten

06.09.2017

Ein neuer Artikel wurde publiziert.
3D cross-sectional imaging of the inflamed gut with Light Sheet Fluorescence Microscopy for translational research in IBD.

20.08.2017

Ein neuer Artikel wurde publiziert.
Rescue of T-cell function during persistent pulmonary adenoviral infection by TLR9 activation.

21.06.2017

Ein neuer Artikel wurde publiziert.
Irf4-dependent CD103+CD11b+ dendritic cells and the intestinal microbiome regulate monocyte and macrophage activation and intestinal peristalsis in postoperative ileus.

16.06.2017

Unser Institut hält den jährlichen CMSO Workshop vom 19. - 20. Juni 2017 ab.